聚合酶鏈反應(PCR)技術是在體外進行的由引物介導的酶促DNA擴增反應。PCR的原理是在模板DNA、PCR引物、四種脫氧核糖核苷酸(dNTP)及適當濃度的Mg2+存在的條件下，依賴于DNA聚合酶的體外酶促合成反應。兩個引物分別位于靶序列兩端，同兩條模板的3’端互補，由此限定擴增片段。PCR反應由一系列的變性→退火→延伸反復循環構成，即在高溫下模板雙鏈DNA變性解鏈，然后在較低溫度下同過量引物退火，再在適中溫度下由DNA聚合酶催化進行延伸。理論上，經過N次循環可使特定片段擴增到2n-1，考慮到擴增效率達不到100%，所以通常經25到30次循環可擴增到106倍，足夠后續實驗展開。
 

　　擴增產物出現多條帶(雜帶)：
 

　　1、 引物用量偏大，引物的特異性不高。應調換引物或降低引物的使用量。
 

　　2、循環的次數過多。適當增加模板的量，減少循環次數。
 

　　3、 酶的用量偏高或酶的質量不好，應降低酶量或調換另一來源的酶。
 

　　4、退火溫度偏低，退火及延伸時間偏長。應提高退火溫度，減少變性與延伸時間，也可采用二種溫度的PCR擴增。以2度為梯度設計梯度PCR反應優化退火溫度。
 

　　5、 樣品處理不當。
 

　　6、 Mg2+濃度偏高，因適當調整Mg2+使用濃度。
 

　　7、 若為PCR試劑盒，也可能時試劑盒本身質量有問題。
 

　　8、 復制提前終止。使用非熱啟動的聚合酶時常有發生。冰上準備反應體系或采用熱啟動聚合酶。
 

　　9、 反應緩沖液未全融化或未充分混勻。確保反應緩沖液融化全并全混勻。
 

　　10、 引物特異性差。利用BLAST檢查引物特異性或重新設計引物。
 

　　11、 引物量過多。減少反應體系中引物的用量。
 

　　12、 模板量過多。質粒DNA的用量應<50ng，而基因組DNA則應<200ng。
 

　　13、 外源DNA污染。確保操作的潔凈。